Article 3
L’annexe II à la décision du 13 Chaoual 1420 correspondant au 19 janvier 2000, modifiée et complétée, susvisée, est modifiée en conséquence.||
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Décret présidentiel
Décret présidentiel du 3 Chaâbane 1438 correspondant au 30 avril 2017 mettant fin aux fonctions d’un
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Texte (17 article(s))
Article 3
Le présent arrêté sera publié au Journal officiel de la République algérienne démocratique et| |Vu le décret présidentiel n° 15-125 du 25 Rajab 1436||populaire.| |correspondant au 14 mai 2015, modifié, portant||Fait à Alger, le 8 Joumada El Oula 1438 correspondant| |nomination des membres du Gouvernement; Vu le décret présidentiel n° 17-25 du 19 Rabie Ethani 1438 correspondant au 18 janvier 2017 chargeant le ministre de l'habitat, de l'urbanisme et de la ville de l'intérim du ministre du commerce;||au 5 février 2017. METHODE HORIZONTALE POUR LA| |Vu le décret exécutif n° 90-39 du 30 janvier 1990, modifié et complété, relatif au contrôle de la qualité et à||RECHERCHE DES SALMONELLA SPP| |la répression des fraudes, notamment son article 19;||1. DOMAINE D'APPLICATION :| |Vu le décret exécutif n° 02-453 du 17 Chaoual 1423||La présente méthode a pour objet de fixer une| |correspondant au 21 décembre 2002 fixant les attributions||technique horizontale pour la recherche des| |du ministre du commerce;||Salmonella spp, incluant Salmonella Typhi et Salmonella Paratyphi. Elle est applicable aux produits| |Vu le décret exécutif n° 05-465 du 4 Dhou El Kaâda||destinés à la consommation humaine ou à l'alimentation| |1426 correspondant au 6 décembre 2005 relatif à||animale.| |l’évaluation de la conformité;||NOTE 1- Cette méthode peut ne pas permettre de| |Vu le décret exécutif n° 13- 328 du 20 Dhou EL Kaâda||retrouver toutes les Salmonella Typhi et Paratyphi.| |1434 correspondant au 26 septembre 2013 fixant les conditions et les modalités d'agrément des laboratoires au||2. TERMES ET DEFINITIONS :| |titre de la protection du consommateur et de la répression des fraudes;||Au sens de la présente méthode, il est entendu par : 2.1 Salmonella :| |Vu le décret exécutif n° 15- 172 du 8 Ramadhan 1436||Micro-organismes formant des colonies typiques ou| |correspondant au 25 juin 2015 fixant les conditions et les||moins typiques sur des milieux sélectifs solides et| |modalités applicables en matière des spécifications||possédant les caractéristiques biochimiques et| |microbiologiques des denrées alimentaires;||sérologiques décrites lorsque l'essai est exécuté selon la| |Vu l'arrêté du 26 Rajab 1425 correspondant au 11||présente méthode.| |septembre 2004 rendant obligatoire la méthode de préparation des échantillons pour essai et des dilutions en||2.2 Recherche des Salmonella :| |vue de l'examen microbiologique; Vu l’arrêté du 28 Rajab 1435 correspondant au 28 mai||Détermination de la présence ou de l'absence de Salmonella (2.1) dans une quantité déterminée de produit.| |2014 rendant obligatoire la méthode de préparation des échantillons, de la suspension mère et des dilutions||3. PRINCIPE :| |décimales en vue de l'examen microbiologique;|Arrête :|3.1. Généralités : La recherche de Salmonella nécessite quatre (4) phases successives (A : schéma du mode opératoire).| |
Article 1er
Le bureau de douane de Béthioua (code 31/2-006) est supprimé.
Article 6
Le présent arrêté sera publié au Journal officiel de la République algérienne démocratique et populaire. Fait à Alger, le 3 Joumada El Oula 1438 correspondant au 31 janvier 2017. Tayeb LOUH. MINISTERE DES FINANCES Décision du 2 Joumada El Oula 1438 correspondant au 30 janvier 2017 portant suppression d’un bureau de douane. ———— Le directeur général des douanes, Vu la loi n° 79-07 du 21 juillet 1979, modifiée et complétée, portant code des douanes, notamment son article 32; Vu le décret exécutif n° 11-421 du 13 Moharram 1433 correspondant au 8 décembre 2011 fixant l’organisation et le fonctionnement des services extérieurs de la direction générale des douanes; Vu l’arrêté interministériel du 25 Joumada El Oula 1433 correspondant au 17 avril 2012 fixant les sièges administratifs des directions régionales des douanes et les inspections divisionnaires qui leur sont rattachées au titre de leur compétence territoriale; Vu la décision du 7 août 1991, modifiée et complétée, portant classement des recettes des douanes; Vu la décision du 13 Chaoual 1420 correspondant au 19 janvier 2000, modifiée et complétée, relative aux bureaux de douane; Décide :
Article 1er
Il est créé des ordres d'avocats comme suit : A- ordre d’avocats de Biskra; B- ordre d’avocats de Khenchela; C- ordre d’avocats de Saïda.
Article 4
Le Président de l'Union nationale des ordres d'avocats et le bâtonnier de l'ordre d'avocats de Batna, et le bâtonnier de l'ordre d'avocats de Oum El Bouaghi, et le bâtonnier de l'ordre d'avocats de Mascara sont chargés de la structuration ainsi que de l'installation de ces nouveaux ordres.
Article 1er
Dans la limite de ses attributions, délégation est donnée à M. Abdelkader Laouti, directeur de l'administration des moyens, à l'effet de signer au nom du ministre de l'agriculture, du développement rural et de la pêche, tous actes et décisions y compris les arrêtés.
Article 5
Le directeur des affaires civiles et du sceau de l'Etat, est chargé de l'exécution du présent arrêté.
Article 2
Le présent arrêté sera publié au Journal officiel de la République algérienne démocratique et populaire. Fait à Alger, le 26 Ramadhan 1438 correspondant au 21 juin 2017. Abdelkader BOUAZGHI.|| #### 29 Chaoual 1438 23 juillet 2017
Article 2
Les sièges de ces ordres sont fixés comme suit : — l'ordre d’avocats de Biskra au siège de la Cour de Biskra; — l'ordre d’avocats de Khenchela au siège de la Cour de Khenchela; — l'ordre d’avocats de Saïda au siège de la Cour de Saïda.
Article 4
Le directeur régional des douanes d’Oran et le chef de l’inspection divisionnaire des douanes d’Arzew sont chargés, chacun en ce qui le concerne, de l’application de la présente décision qui sera publiée au Journal officiel de la République algérienne démocratique et populaire. Fait à Alger, le 2 Joumada El Oula 1438 correspondant au 30 janvier 2017. Kaddour BENTAHAR. MINISTERE DE L'AGRICULTURE, DU DEVELOPPEMENT RURAL ET DE LA PECHE Arrêté du 26 Ramadhan 1438 correspondant au 21 juin 2017 portant délégation de signature au directeur de l'administration des moyens. ———— Le ministre de l'agriculture, du développement rural et de la pêche; Vu le décret présidentiel n° 17-180 du 28 Chaâbane 1438 correspondant au 25 mai 2017 portant nomination des membres du Gouvernement; Vu le décret exécutif n° 16-242 du 20 Dhou El Hidja 1437 correspondant au 22 septembre 2016 fixant les attributions du ministre de l'agriculture, du développement rural et de la pêche; Vu le décret exécutif n° 16-243 du 20 Dhou El Hidja 1437 correspondant au 22 septembre 2016 portant organisation de l'administration centrale du ministère de l'agriculture, du développement rural et de la pêche; Vu le décret exécutif n° 17-182 du 3 Ramadhan 1438 correspondant au 29 mai 2017 autorisant les membres du Gouvernement à déléguer leur signature; Vu le décret présidentiel du 3 Chaâbane 1438 correspondant au 30 avril 2017, portant nomination de M. Abdelkader Laouti, directeur de l'administration des moyens au ministère de l'agriculture, du développement rural et de la pêche; Arrête :
Article 2
La gestion du passif (affaires en instance) et de l’actif du bureau de douane, visé à l’article 1er ci-dessus, est prise en charge par le bureau de douane d’Arzew (31/2-004), à compter du 1er février 2017.
Article 3
Les ressorts des ordres, susvisés, sont fixés comme suit : — ordre d’avocats de Biskra : ressort de la Cour de Biskra; — ordre d’avocats de Khenchela : ressort de la Cour de Khenchela; — ordre d’avocats de Saïda : ressort de la Cour de Saïda, de la Cour de Naâma et de la Cour d'El Bayadh.|| ||12 JOURNAL OFFICIEL DE LA REPUBLIQUE ALGERIENNE N||29 Chaoual 1438 ° 44 23 juillet 2017|| |---|---|---|---|---| ||
Article 2
Pour la recherche des salmonella spp, les ||MINISTERE DU COMMERCE|laboratoires de la répression des fraudes et les laboratoires| |---|---|---| |||agréés à cet effet, doivent employer la méthode jointe en| |Arrêté du 8 Joumada El Oula 1438 correspondant au||annexe du présent arrêté.| |5 février 2017 rendant obligatoire la méthode||Cette méthode doit être utilisée par le laboratoire| |horizontale pour la recherche des salmonella spp.||lorsqu’une expertise est ordonnée.| |Le ministre du commerce,||
Article 1er
En application des dispositions de||NOTE 2- Les Salmonella peuvent, en effet, être| |l’article 19 du décret exécutif n° 90-39 du 30 janvier||présentes en petit nombre et sont souvent accompagnées| |1990, modifié et complété, susvisé, le présent arrêté a||d'un nombre beaucoup plus grand que d'autres| |pour objet de rendre obligatoire la méthode horizontale||micro-organismes appartenant à la famille des| |pour la recherche des salmonella spp.||Enterobacteriaceæ ou à d'autres familles.|
Article Annexe
#### ———— Abdelmadjid TEBBOUNE. —————— ANNEXE
Article Annexe
#### 29 Chaoual 1438 23 juillet 2017 En conséquence, un préenrichissement et un enrichissement sélectif sont souvent nécessaires, afin de pouvoir rechercher les Salmonella en nombre restreint ou ayant subi une altération. #### 3.2. Préenrichissement en milieu non sélectif liquide : Ensemencement de la prise d'essai dans de l'eau peptonée tamponnée à la température ambiante, puis incubation à 37 °C ± 1 °C pendant 18 h ± 2 h. Pour certains aliments (8.1.2), l'utilisation d'autres modalités de préenrichissement est nécessaire. En cas de grandes quantités, il convient de chauffer l’eau peptonée tamponnée à 37 °C ± 1 °C avant l’ensemencement de la prise d’essai. #### 3.3. Enrichissement en milieux sélectifs liquides : Ensemencement du bouillon Rappaport-Vassiliadis avec Soja (bouillon RVS) et d'un bouillon Muller-Kauffmann au Tétrathionate-novobiocine (MKTTn) avec la culture obtenue en (3.2). Incubation du bouillon RVS à 41,5 °C ± 1 °C pendant 24 h ± 3 h et du bouillon MKTTn à 37 °C ± 1°C pendant 24 h ± 3 h. #### 3.4. Isolement et identification : A partir des cultures obtenues en (3.3), ensemencement de deux milieux sélectifs solides : — gélose xylose lysine désoxycholate (gélose XLD); — un autre milieu sélectif solide approprié, laissé au choix du laboratoire, complémentaire du milieu gélosé XLD, permettant la recherche de Salmonella lactose positive, incluant Salmonella Typhi et Salmonella Paratyphi. Incubation du milieu gélose XLD à 37 °C ± 1 °C puis examen après 24 h ± 3 h. Incubation du second milieu sélectif selon les recommandations du fabricant. **NOTE 3-** La gélose au vert brillant (BGA: brillant green agar) et la gélose au sulfite de bismuth, etc, pourraient être utilisées comme second milieu d'isolement. #### 3.5. Confirmation : Repiquage des colonies présumées de Salmonella isolées en (3.4), et confirmation au moyen des essais biochimiques et sérologiques appropriés. #### 4. MILIEUX DE CULTURE, RÉACTIFS ET SÉRUM : #### 4.1. Milieux de culture et réactifs : **NOTE 4-**En raison du nombre important de milieux de culture et de réactifs, il a été jugé important, pour une meilleure compréhension de la méthode, de donner leur composition et leur préparation dans (B) de la présente méthode. **4.1.1. Milieu de préenrichissement non sélectif :** eau peptonée tamponnée (B- point B.1). #### 4.1.2. Premier milieu d'enrichissement sélectif : bouillon Rappaport-Vassiliadis avec soja (bouillon RVS) (B-point B.2). #### 4.1.3. Deuxième milieu d'enrichissement sélectif : bouillon Muller-Kauffmann au tétrathionate-novobiocine (bouillon MKTTn) (B-point B.3). #### 4.1.4. Milieux d'isolement sélectifs solides : **4.1.4.1. Premier milieu :** gélose au xylose lysine désoxycholate (gélose XLD) (B-point B.4). #### 4.1.4.2. Deuxième milieu : Le choix du deuxième milieu est laissé à l'initiative du laboratoire d'essais. Il convient de suivre scrupuleusement les instructions du fabricant quant à sa préparation. **4.1.5. Gélose nutritive** (B-point B.5). #### 4.1.6. Gélose au citrate de fer et aux trois sucres **(gélose TSI)** (B-point B.6). **4.1.7. Gélose à l'urée** (Christensen) (B-point B.7). #### 4.1.8. Milieu pour décarboxylation de la L-lysine (B-point B.8). #### 4.1.9. Réactif pour la recherche de la #### galactosidase (ou disques de papier préparés et utilisés selon les instructions du fabricant) (B-point B.9). #### 4.1.10. Réactifs pour la réaction de Voges-Proskauer **(réaction VP)** (B-point B.10). #### 4.1.11. Réactifs pour la recherche de l'indole (B-point B.11). **4.1.12. Gélose nutritive semi-solide** (B-point B.12). **4.1.13. Solution saline physiologique** (B-point B.13). #### 4.2. Sérums : Sérums agglutinants contenant des anticorps contre un ou plusieurs facteurs antigéniques «O», c'est-à-dire des antisérums contenant un ou plusieurs groupes «O» (dénommés antisérums «O» monovalents ou polyvalents), des antisérums «Vi» et des antisérums contenant des anticorps contre un ou plusieurs facteurs «H» (dénommés antisérums «H» monovalents ou polyvalents). Il est important de s'assurer que les antisérums utilisés conviennent pour la recherche de tous les sérotypes de Salmonella. Dans ce but, des antisérums préparés par un fournisseur dont la compétence est reconnue, peuvent être utilisés. #### 5. APPAREILLAGE ET VERRERIE : Matériel courant de laboratoire de microbiologie et, en particulier, ce qui suit : |29 Chaoual 1438 23 juillet 2017||| |---|---|---| |5.1. Appareils pour la stérilisation en chaleur sèche|Si la masse de la prise d'essai spécifiée n'est pas|| |(four) ou en chaleur humide (autoclave).|de 25 g, utiliser la quantité nécessaire de milieu de préenrichissement pour obtenir une dilution au 1/10.|| |5.2. Enceinte de séchage ou étuve ventilée par||| |convection réglable entre 37 °C et 55 °C.|Lorsqu'on doit examiner plus d'une prise d'essai de 25 g provenant d'un lot déterminé de produit alimentaire, les|| |5.3. Étuve réglable à 37 °C ± 1 °C.|prises d'essai peuvent être mélangées, à condition que ce mélange ne modifie pas les résultats d'analyse en ce qui|| |5.4. Bain d'eau réglable à 41,5 °C ± 1 °C ou étuve|concerne ce produit alimentaire en particulier.|| |réglable à 41,5 °C ± 1 °C.|Par exemple, si on doit examiner 10 prises d'essai de 25 g, il est possible de combiner ces 10 unités afin|| |5.5. Bains d'eau réglables de 44 °C à 47 °C.|d'obtenir une prise d’essai composée de 250 g et ajouter 2,25|de bouillon de préenrichissement ou bien encore,| |5.6. Bain d'eau réglable à 37 °C ± 1 °C.|réunir les portions de 0,1 ml (dans 10 ml de bouillon RVS) et de 1 ml (dans 10 ml de bouillon MKTTn) des|| |Il est recommandé d'utiliser des bains d'eau [(5.4), (5.5)|bouillons de préenrichissement provenant des 10 prises|| |et (5.6)] contenant un agent antibactérien, la dose|d'essai séparées (8.3.1) pour en enrichir 100 ml des|| |infectante de Salmonella étant faible.|milieux d'enrichissement sélectifs.|| |5.7. Anses bouclées d'environ 3 mm de diamètre ou 10|pour certains aliments : 8.1.2. Préparations spécifiques de la suspension mère|| |µl ou pipettes stériles.|8.1.2.1. Cacao et produits contenant du cacao|| |5.8. pH-mètre ayant une précision de réglage de ± 0,1|(par exemple, plus de 20 %) :|| |unité de pH de 20 °C à 25 °C.|Ajouter à l'eau peptonée tamponnée (4.1.1) de|| |5.9. Tubes à essai ou flacons de capacité appropriée.|préférence 50 g/l de caséine (éviter l’emploi de caséine acide) ou bien 100 g/l de lait écrémé en poudre et ajouter,|| |Des bouteilles ou flacons à capsules métalliques ou en|après environ 2 h d'incubation, 0,018 g/l de vert brillant|| |matière plastique à vis non toxiques peuvent être utilisés.|s’il est probable que le produit soit fortement contaminé par des flores Gram positif.|| |de 10 ml et 1 ml de capacités nominales, graduées 5.10. Pipettes graduées ou pipettes automatiques|8.1.2.2. Aliments acides et acidifiants :|| |respectivement en divisions de 0,5 ml et 0,1 ml.|S'assurer que la valeur du pH ne descende pas au-dessous de 4,5 pendant le préenrichissement.|| |5.11 Boîtes de Pétri de petites dimensions (diamètre de||| |90 mm à 100 mm) et/ou de grandes dimensions (diamètre|NOTE 6- Le pH d'aliments acides et acidifiants est plus|| |de 140 mm).|stable quand l'eau peptonée tamponnée à double titre est utilisée.|| |NOTE 5- Le matériel à usage unique est acceptable au||| |même titre que la verrerie réutilisable, si les spécifications|8.2. Préenrichissement non sélectif :|| |sont similaires.|Incuber la suspension mère (8.1) à 37 °C ± 1 °C|| |6. ÉCHANTILLONNAGE :|pendant 18 h ± 2 h.|| |L'échantillon doit être réellement représentatif, non|8.3. Enrichissement sélectif :|| |endommagé ou modifié lors du transport et de|8.3.1. Transférer 0,1 ml de la culture obtenue en (8.2)|| |l'entreposage.|dans un tube contenant 10 ml de bouillon RVS (4.1.2) et également, transférer 1 ml de la culture obtenue en (8.2)|| |7. PREPARATION DE L'ECHANTILLON POUR|dans un tube contenant 10 ml de bouillon MKTTn (4.1.3).|| |ESSAI :|8.3.2. Incuber le bouillon RVS ensemencé (8.3.1) à|| |Préparer l'échantillon pour essai conformément à la|41,5 °C ± 1 °C pendant 24 h ± 3 h et le bouillon MKTTn à|| |méthode spécifique du produit concerné.|37 °C ± 1 °C pendant 24 h ± 3 h. Il convient de s’assurer que la température maximale d’incubation ne dépasse, à|| |8. MODE OPERATOIRE (A : schéma du mode|aucun moment, 42,5 °C pour le bouillon RVS.|| |opératoire).|8.4. Isolement et identification :|| |8.1. Prise d'essai et suspension mère :|8.4.1. A partir de la culture obtenue dans le bouillon|| |8.1.1. Généralités :|RVS (8.3.2) après 24 h ± 3 h d'incubation, ensemencer avec une anse (5.7) la surface d'une grande boîte de Petri|| |Pour la préparation de la suspension mère, utiliser|(5.11) contenant le milieu d'isolement sélectif [gélose|| |dans le cas général comme diluant le milieu de|XLD, (4.1.4.1)], de façon à permettre le développement|| |préenrichissement spécifié en (4.1.1) et (3.2).|de colonies bien isolées.|| #### 29 Chaoual 1438 23 juillet 2017 |A défaut de grandes boîtes, utiliser deux petites boîtes,|Utiliser des cultures pures pour les confirmations| |---|---| |l'une après l'autre, en se servant de la même anse.|biochimiques et sérologiques.| |Procéder de la même manière avec le deuxième milieu d'isolement sélectif (4.1.4.2) en se servant d'une nouvelle|8.5.3. Confirmation biochimique :| |anse et de boîtes de Petri de dimensions appropriées.|8.5.3.1. Généralités :| |8.4.2. A partir de la culture obtenue dans le bouillon|A l'aide d'un fil à ensemencer, ensemencer les milieux| |MKTTn (8.3.2) après 24 h ± 3 h d'incubation, répéter les|indiqués de [(8.5.3.2) à (8.5.3.7)] avec chacune des| |opérations décrites en (8.4.1) avec les deux milieux|cultures obtenues à partir des colonies retenues en (8.5.2).| #### 8.5.3.2. Gélose TSI (4.1.6) : Ensemencer la pente du milieu en stries et le culot par piqûre. Incuber à 37 °C ± 1 °C durant 24 h ± 3 h. Interpréter les phénomènes qui se produisent, de la façon suivante : d'isolement sélectifs. **8.4.3.** Dans le cas du premier milieu d'isolement (4.1.4.1), retourner les boîtes [(8.4.1) et (8.4.2)], les placer dans une étuve (5.3) réglée à 37 °C. Pour le second milieu d'isolement (4.1.4.2), suivre les recommandations du fabricant. **8.4.4.** Après 24 h ± 3 h d'incubation, examiner les boîtes (8.4.3) afin de rechercher la présence de colonies typiques de Salmonella, ainsi que les colonies atypiques susceptibles d'être des Salmonella (note 7). Marquer leur position sur le dessous de la boîte. Les colonies typiques de Salmonella cultivées sur la gélose XLD ont un centre noir et sont entourées d’un halo clair transparent rouge dû à un changement de l’indicateur du milieu. **NOTE 7-** Les Salmonella H2S négatif (par exemple Salmonella Paratyphi A) cultivées sur la gélose XLD sont roses avec un centre rose foncé et les Salmonella lactose positif cultivées sur la gélose XLD sont jaunes sans noircissement. Incuber le second milieu sélectif à la température et au temps appropriés puis examiner la présence de colonies qui, d’après leurs caractéristiques, peuvent être considérées comme des Salmonella présumées. #### 8.5. Confirmation : #### 8.5.1. Généralités : Des kits d’identification biochimique des colonies peuvent être utilisés pour identifier les salmonella. Il convient d’utiliser ces kits conformément aux instructions du fabricant. **NOTE 8-** L'aspect des colonies de Salmonella peut, quelquefois, varier non seulement d'une espèce à une autre, mais également d'un lot de milieu de culture à un autre. #### 8.5.2. Choix des colonies pour la confirmation : Pour la confirmation, prélever à partir de chaque boîte a) Culot - jaune..............................................glucose positif (utilisation du glucose) - rouge ou inchangé...........................glucose négatif (pas d’utilisation du glucose) - noir.......................................................formation de sulfure d'hydrogène - bulles ou fissures.......................... formation de gaz à partir du glucose b) Pente de la gélose - jaune................................lactose et/ou saccharose positifs (utilisation du lactose et/ou du saccharose) - rouge ou inchangé..................lactose et saccharose négatifs (pas d'utilisation du lactose ni du saccharose) Les cultures caractéristiques de Salmonella correspondent à une pente alcaline (rouge) et un culot acide (jaune) avec formation de gaz (bulles) et (dans environ 90 % des cas) formation de sulfure d'hydrogène (noircissement de la gélose) (tableau 1). |(deux boîtes de petites dimensions ou une boîte de|Lorsqu'on isole une Salmonella lactose positif (3.4), la| |---|---| |grandes dimensions) de chacun des milieux sélectifs (8.4),|pente de la gélose TSI est jaune. En conséquence, une| |au moins, une colonie considérée comme caractéristique|confirmation préliminaire de cultures de Salmonella, ne| |ou suspecte, puis quatre autres colonies si la première|doit pas être fondée uniquement sur les résultats obtenus à| |s’est révélée négative.|partir de la gélose TSI (8.5.3.2).| |Dans le cas d’études épidémiologiques, il est recommandé que cinq (5) colonies, au moins, soient|8.5.3.3. Gélose à l'urée (4.1.7) :| |identifiées. S'il se trouve qu'une boîte contient moins de|Ensemencer en stries la pente de la gélose. Incuber à| |cinq (5) colonies caractéristiques ou suspectes, retenir|37 °C ± 1 °C durant 24 h ± 3 h et examiner de temps en| |toutes les colonies caractéristiques ou suspectes. Ensemencer les colonies sélectionnées sur la surface de|temps.| |boîtes de gélose nutritive (4.1.5) préalablement séchées,|En cas de réaction positive, la décomposition de l'urée| |de façon à permettre le développement de colonies bien|produit un dégagement d'ammoniac, faisant virer le rouge| |isolées. Incuber les boîtes ainsi ensemencées (8.4.3) à|de phénol au rose puis au rouge foncé. La réaction est| |37 °C ± 1 °C durant 24 h ± 3 h.|souvent visible au bout de 2 h à 4 h.| ||29 Chaoual 1438 23 juillet 2017|||||JOURNAL OFFICIEL DE LA REPUBLIQUE ALGERIENNE N ° 44 17| |---|---|---|---|---|---|---| ||(4.1.8) : négative. (4.1.13).||galactosidase et mélanger.|surface. Incuber à 37 °C ± 1 °C durant 24 h ± 3 h. 8.5.3.5. Recherche de la galactosidase|8.5.3.4. Milieu de décarboxylation de la L-lysine Ensemencer le milieu liquide juste au-dessous de la L'apparition d'une turbidité et d'une couleur violette après incubation indique une réaction positive et l'apparition d'une couleur jaune indique une réaction Mettre en suspension une anse de la colonie suspecte dans un tube contenant 0,25 ml de la solution saline Ajouter une (1) goutte de toluène et agiter le tube. Placer ce dernier dans le bain d'eau (5.6) réglé à 37 °C et l'y laisser séjourner quelques minutes (environ 5 min). Ajouter 0,25 ml du réactif pour la recherche de la|8.5.3.6. Milieu pour la réaction de Voges-Proskauer (VP) (4.1.10) : Mettre en suspension une anse de la colonie suspecte dans un tube stérile contenant 3 ml du milieu VP. Incuber à 37 °C ± 1 °C durant 24 h ± 3 h. Après incubation, ajouter deux (2) gouttes de la solution de créatine, trois (3) gouttes de la solution éthanolique de naphtol-1 et ensuite deux (2) gouttes de la solution d'hydroxyde de potassium en agitant après avoir ajouté (4.1.9) : chaque réactif. La formation d'une coloration rose à rouge brillant dans un délai de 15 min indique une réaction positive. 8.5.3.7. Milieu pour la recherche de l'indole (4.1.11) : Ensemencer un tube contenant 5 ml du milieu tryptone/tryptophane avec la colonie suspecte et incuber à 37 °C ± 1 °C durant 24 h ± 3 h. Après incubation, ajouter| |autre.|Essai a|Hydrolyse de l’urée Recherche de l’indole complémentaires.|Glucose, TSI (formation d’acide) Glucose, TSI (formation gaz) Lactose, TSI (formation d’acide) Saccharose, TSI (formation d’acide) Sulfure d’hydrogène, TSI Décarboxylation de la lysine Réaction à la galactosidase Réaction de Voges-Proskauer|réaction est souvent visible au bout de 20 min. préparés (4.1.9), suivre les instructions du fabricant. [(8.5.3.2) à (8.5.3.7)] b Salmonella Typhi est anaérogène.|Replacer le tube dans le bain d'eau réglé à 37 °C, l'y laisser séjourner 24 h ± 3 h en l'examinant de temps à Une couleur jaune indique une réaction positive. La Dans le cas d'utilisation de disques en papier tout|1 ml du réactif de Kovacs. La formation d'un anneau rouge indique une réaction positive. Un anneau jaune-brun indique une réaction négative. 8.5.3.8. Interprétation des essais biochimiques : Les Salmonella donnent en général les réactions indiquées dans le Tableau 1. Tableau 1 : Interprétation des essais biochimiques Souche de Salmonella S. Typhi S. Paratyphi A S. Paratyphi B S. Paratyphi C Autres souches Réaction Réaction Réaction Réaction Réaction % a % a % a + 100 + 100 + + + 100 0 + 100 + + + 92 -b 2 - 100 - - - 1 - 0 - 0 - - - 1 - 97 - 10 + + + 92 + 0 - 0 - - - 1 - 98 - 0 + + + 95 + 0 - 0 - - - - 2c 0 - 0 - - - - 0 0 - 0 - - - - 1 Ces pourcentages indiquent seulement que toutes les souches de Salmonella ne donnent pas les réations marquées par + ou-. Ces pourcentages peuvent varier au sein d’un même sérotype et d’un sérotype à un autre pour les sérotypes ayant causé des empoisonnements alimentaires à différents endroits. c Les Salmonella enterica du sous-genre arizonæ donnent des réactions lactose positives ou négatives mais sont toujours galactosidase positive. Pour l’étude de ces souches, il peut être utile d’effectuer des essais biochimiques| #### 29 Chaoual 1438 23 juillet 2017 #### 8.5.4. Confirmation sérologique et sérotypage : #### 8.5.4.1. Généralités : La recherche de la présence des antigènes «O», «Vi», ou «H» des Salmonella est effectuée par une agglutination sur lame avec les sérums appropriés à partir de colonies pures (8.5.2) et après élimination des souches autoagglutinables. #### 8.5.4.2. Elimination des souches autoagglutinables : Déposer une (1) goutte de la solution saline (4.1.13) sur une lame de verre parfaitement propre. À l'aide d'une anse bouclée (5.7), disperser dans cette goutte une fraction de la colonie à tester de manière à obtenir une suspension homogène et trouble. **NOTE 9 -** Il est aussi possible de disperser une fraction de la colonie à tester dans une goutte d'eau, puis de mélanger cette solution à une goutte de solution saline (4.1.13). Faire osciller la lame durant 30 s à 60 s. Observer le résultat sur un fond noir de préférence à l'aide d'une loupe. Si les bactéries se sont rassemblées en masses plus ou moins distinctes, la souche est considérée comme autoagglutinable et ne doit pas être soumise aux essais suivants et ainsi la mise en évidence des antigènes devient impossible. |8.5.4.3. Mise en évidence des antigènes «O» :|biochimiques|agglutination||sérologiques|| |---|---|---|---|---|---| |A partir d'une colonie pure reconnue non|||||| |autoagglutinable, opérer comme en (8.5.4.2), mais en utilisant une (1) goutte de l'antisérum «O» (4.2) au lieu de la solution saline (4.1.13).|Typiques||Non|Antigène «O», «Vi» ou «H» positives|Souches considérées comme étant des| |S'il y a agglutination, la réaction est considérée comme positive.|||||Salmonella| |Utiliser les sérums polyvalents et monovalents l'un après l'autre.|Typiques||Non|Toutes les réactions|| #### 8.5.4.3. Mise en évidence des antigènes «O» : S'il y a agglutination, la réaction est considérée comme positive. #### 8.5.5. Interprétation des réactions biochimiques et sérologiques : Le Tableau 2 donne l'interprétation des essais de confirmation [(8.5.3) et (8.5.4)] effectués sur les colonies retenues (8.5.2). #### 8.5.6. Confirmation définitive : Les souches considérées comme étant des Salmonella ou comme pouvant être des Salmonella (Tableau 2) doivent être envoyées à un centre agréé pour l'identification des Salmonella en vue d'une détermination définitive du sérotype, accompagnées de toutes les informations concernant ces souches. #### 9. EXPRESSION DES RESULTATS : Selon les résultats de l'interprétation, indiquer la présence ou l'absence de Salmonella dans une prise d'essai de x g ou x ml de produit. #### Tableau 2 — Interprétation des essais de confirmation #### Réactions Auto Réactions Interprétation biochimiques agglutination sérologiques #### 8.5.4.4. Mise en évidence des antigènes «Vi» : |Opérer comme en (8.5.4.2), mais en utilisant une (1)|Typiques|Oui|Non|| |---|---|---|---|---| |goutte de l'antisérum «Vi» (4.2) au lieu de la solution|||effectuées|Peuvent| |saline. S'il y a agglutination, la réaction est considérée comme|||(9.5.4.2)|être des Salmonella| |positive. 8.5.4.5. Mise en évidence des antigènes «H»: Ensemencer la gélose nutritive semi-solide (4.1.12) avec une colonie pure non autoagglutinable. Incuber à|Pas de réactions typiques|Non/Oui|Antigène «O», «Vi» ou «H» positives|| |37 °C ± 1 °C durant 24 h ± 3 h.|Pas de réactions|Non/Oui|Toutes les réactions|Ne sont pas considérées| |Utiliser cette culture pour l'examen des antigènes «H»|typiques||négatives|comme étant| |en opérant comme en (8.5.4.2), mais en utilisant une (1)||||des| |goutte de l'antisérum «H» (4.2) au lieu de la solution||||Salmonella| saline. négatives #### 29 Chaoual 1438 23 juillet 2017 #### A: Schéma du mode opératoire Prise d'essai + Eau peptonée tamponée à température ambiante Incubation (8.2) pendant 18 h± 2 h à 37 ° C ± 1 ° C PRE-ENRICHISSEMENT 0,1 ml de culture 1ml de culture + 10 ml de bouillon + 10 ml de bouillon RVS (8.3.1) MKTTn (8.3.1) incubation pendant incubation pendant 24 h ± 3 h à 41,5 °C 24 h ± 3 h à 37 °C ± 1 °C ±1 °C #### B : Composition et préparation des milieux de culture et des réactifs #### B.1. Eau peptonée tamponnée : #### B.1.1. Composition : #### Digestat enzymatique de caséine................................10 g #### Chlorure de sodium......................................................5 g Disodium hydrogénophosphate dodécahydraté (Na HPO ,12H O).......................................................9 g 2 4 2 Dihydrogénophosphate de potassium (KH PO )......1,5 g 2 4 #### Eau.......................................................................1000 ml #### B.1.2 Préparation : Dissoudre les composants dans l'eau en chauffant, si nécessaire. Si nécessaire, ajuster le pH de sorte qu'après stérilisation il soit de 7 ± 0,2 à 25 °C. Répartir le milieu par quantités nécessaires pour l'analyse, dans des flacons de capacité adéquate (5.9). Stériliser à l'autoclave (5.1) réglé à 121 °C pendant 15 min. #### B.2 Bouillon Rappaport-Vassiliadis avec soja (bouillon RVS) #### B.2.1 Solution A : #### B.2.1.1 Composition : #### Digestat enzymatique de soja.......................................5 g #### Chlorure de sodium......................................................8 g Dihydrogénophosphate de potassium (KH2PO4)..................................................................1,4 g #### Dipotassium hydrogénophosphate (K2HPO4 ).........0,2 g #### Eau.......................................................................1000 ml #### B.2.1.2 Préparation : Si nécessaire, dissoudre les composants dans l’eau en chauffant à 70 °C environ. Cette solution doit être préparée le jour même de la préparation du milieu RVS. #### B.2.2 Solution B : #### B.2.2.1 Composition : Chlorure de magnésium hexahydraté (MgCl2, 6h2O)..........................................................400 g #### Eau.......................................................................1000 ml #### ENRICHISSEMENT SELECTIF Milieu XLD et un second milieu gélosé au choix (8.4.1) incubation pendant 24 h ± 3 h à 37 °C ± 1 °C ISOLEMENT Au moins une colonie caractéristique pour chaque milieu et quatre colonies si la première est négative (8.5.2) Gélose nutritive, incubation pendant 24 h ± 3 h à 37 °C ± 1 °C (8.5.2) CONFIRMATION Confirmation Confirmation biochimique (8.5.3) sérologique (8.5.4) Expression des résultats (9) |20|JOURNAL OFFICIEL DE LA REPUBLIQUE ALGERIENNE N||° 44|29 Chaoual 1438 23 juillet 2017| |---|---|---|---|---| |B.2.2.2. Préparation : Dissoudre le chlorure de magnésium dans l'eau. En raison de la forte hygroscopicité du sel, il est conseillé de dissoudre la totalité du MgCl2, 6H2O contenu dans un récipient récemment ouvert, conformément à la formule de composition citée ci-dessus. Par exemple, 250 g de MgCl2, 6H2O sont ajoutés à 625 ml d'eau pour donner une solution d'un volume final de 788 ml et d'une concentration massique d'environ 31,7 g pour 100 ml de MgCl2, 6H2O. Cette solution peut être conservée dans un flacon en verre brun, à la température ambiante pendant deux (2) ans au maximum. B.2.3. Solution C : B.2.3.1. Composition : Oxalate de vert de malachite.....................................0,4 g Eau..........................................................................100 ml||2 4 B.3.1. Milieu de base : B.3.1.1. Composition :|Digestat enzymatique de soja..................................4,5 g/l Chlorure de sodium.................................................7,2 g/l Dihydrogénophosphate de potassium (KH PO +KH PO).............................................1,44 g/1 2 4 Chlorure de magnésium anhydre (MgC1)..........13,4 g/1 ou Chlorure de magnésium hexahydraté (MgC12,6H2O).....................................................28,6 g/1 Oxalate de vert de malachite............................................................0,036 g/1 B.3. Bouillon Muller-Kauffmann au tétrahionate-novobiocine (MKTTn) : Extrait de viande........................................................4,3 g Digestat enzymatique de caséine...............................8,6 g Chlorure de sodium (NaCl).......................................2,6 g Carbonate de calcium (CaCO3)...............................38,7 g|2| |B.2.3.2. Préparation : Dissoudre l'oxalate de vert de malachite dans l'eau. Cette solution peut être conservée dans un flacon de verre brun, à la température ambiante pendant huit (8) mois au maximum. B.2.4. Milieu complet : B.2.4.1. Composition : Solution A (B.2.1)................................................1000 ml Solution B (B.2.2)..................................................100 ml Solution C (B.2.3)....................................................10 ml B.2.4.2 Préparation : Ajouter à 1000 ml de solution A, 100 ml de solution B et 10 ml de solution C. Si nécessaire, ajuster le pH de sorte qu’après stérilisation il soit de 5,2 ± 0,2. Répartir dans des tubes à essai (5.9) par quantités de 10 ml avant utilisation. Stériliser à l’autoclave (5.1) réglé à 115 °C pendant 15 min. Conserver le milieu ainsi préparé à 3 °C ± 2 °C. L’utiliser le jour de la préparation. La composition finale du milieu est la suivante :|2|2 3 2 B.3.1.2. Préparation : ébullition durant 5 min. homogénéiser le milieu. B.3.2.1. Composition : B.3.2.2. Préparation :|Thiosulfate de sodium pentahydraté (Na S O ,5h O)......................................................47,8 g Sels biliaires à usage bactériologique......................4,78 g Vert brillant........................................................... 9,6 mg Eau........................................................................1000 ml Dissoudre les composants de base déshydratés ou le milieu complet déshydraté dans l’eau, en portant à Si nécessaire, ajuster le pH à 8 ± 0,2 à 25 °C et bien Le milieu de base se conserve 4 semaines à 3 °C ± 2 °C. B.3.2. Solution iodo-iodurée : Iode.............................................................................20 g Iodure de potassium (KI)............................................25 g Eau..........................................................................100 ml Dissoudre complètement l’iodure de potassium dans 10 ml d’eau, puis ajouter l’iode et compléter à 100 ml avec l’eau distillée. Ne pas chauffer. Conserver la solution ainsi préparée à température ambiante dans un récipient étanche.|| |29 Chaoual 1438 23 juillet 2017|JOURNAL OFFICIEL DE LA REPUBLIQUE ALGERIENNE N ° 44 21| |---|---| |B.3.3. Solution de novobiocine : B.3.3.1 Composition :|B.4.1.2. Préparation : Dissoudre les composants de base déshydratés ou le milieu complet déshydraté dans l'eau, en chauffant si| |Sel monosodique de novobiocine............................0,04 g Eau..............................................................................5 ml|nécessaire. Eviter de surchauffer. Si nécessaire, ajuster le pH de sorte qu'après stérilisation il soit de 7,4 ± 0,2 à 25 °C.| |B.3.3.2. Préparation : Dissoudre le sel monosodique de novobiocine dans l’eau et stériliser par filtration. Conserver cette solution jusqu’à quatre (4) semaines à 3 °C ± 2 °C. B.3.4. Milieu complet : B.3.4.1. Composition :|Répartir le milieu de base dans des tubes ou des flacons de capacité appropriée (5.9). Chauffer en agitant fréquemment jusqu'à ébullition du milieu et dissolution de la gélose. Ne pas surchauffer. B.4.2. Préparation des boîtes de milieu gélosé : Transférer immédiatement le milieu dans un bain d'eau (5.5) réglé de 44 °C à 47 °C, agiter et verser dans des boîtes et le laisser se solidifier.| |Milieu de base (B.3.1)..........................................1000 ml Solution iodo-iodurée (B.3.2)...................................20 ml Solution de novobiocine (B.3.3)................................5 ml|Juste avant l'emploi, sécher soigneusement les boîtes de milieu gélosé (de préférence après avoir retiré les couvercles et retourné les boîtes) dans l'étuve (5.2) réglée entre 37 °C et 55 °C jusqu'à séchage de la surface de la| |B.3.4.2. Préparation : Ajouter aseptiquement 5 ml de solution de novobiocine (B.3.3) à 1 000 ml de milieu de base (B.3.1), mélanger puis ajouter 20 ml de solution iodo-iodurée (B.3.2) et homogénéiser le tout. Répartir stérilement le milieu dans des tubes stériles de|gélose. Stocker les boîtes de gélose jusqu'à cinq (5) jours à 3 °C ± 2 °C B.5. Gélose nutritive : B.5.1. Composition :| |capacité appropriée (5.9) en vue de l'analyse. Le milieu complet doit être utilisé le jour de sa préparation. B.4 Gélose xylose lysine désoxycholate (gélose XLD) : B.4.1. Milieu de base : B.4.1.1. Composition :|Extrait de viande..........................................................3 g Peptone........................................................................5 g Gélose............................................................9 g à 18 g1) Eau......................................................................1 000 ml 1) Selon le pouvoir gélifiant de la gélose.| |Extrait de levure en poudre...........................................3 g Chlorure de sodium (NaCl)..........................................5 g Xylose......................................................................3,75 g Lactose.......................................................................7,5 g Saccharose.................................................................7,5 g Hydrochlorure de L-lysine...........................................5 g Thiosulfate de sodium...............................................6,8 g Citrate d’ammonium-fer(III).....................................0,8 g Rouge de phénol......................................................0,08 g Désoxycholate de sodium..............................................1g Gélose..............................................................9 g à 18 g1) Eau........................................................................1000 ml 1) Selon le pouvoir gélifiant de la gélose|B.5.2. Préparation : Dissoudre les composants déshydratés ou le milieu complet déshydraté dans l'eau, en chauffant si nécessaire. Si nécessaire, ajuster le pH de sorte qu'après stérilisation il soit de 7 ± 0,2 à 25 °C. Répartir le milieu de culture dans des tubes ou des flacons de capacité appropriée (5.9). Stériliser à l'autoclave (5.1) réglé à 121 °C pendant 15 min. B.5.3. Préparation des boîtes de milieu gélosé nutritif : Couler environ 15 ml du milieu fondu dans des petites boîtes de Petri stériles (5.11) et opérer comme en B.4.2.| |22|29 Chaoual 1438 JOURNAL OFFICIEL DE LA REPUBLIQUE ALGERIENNE N ° 44 23 juillet 2017| |---|---| |B.6. Gélose au citrate de fer et aux trois sucres (gélose TSI) : B.6.1. Composition : Extrait de viande...........................................................3g Extrait de levure...........................................................3 g Peptone.......................................................................20 g Chlorure de sodium (NaCl)..........................................5 g Lactose.......................................................................10 g|B.7.1.2. Préparation : Dissoudre les composants ou le milieu de base complet déshydraté dans l'eau, en chauffant si nécessaire. Si nécessaire, ajuster le pH de sorte qu'après stérilisation il soit de 6,8 ± 0,2 à 25 °C. Stériliser à l'autoclave (5.1) réglé à 121 °C pendant 15 min. B.7.2. Solution d'urée : B.7.2.1. Composition :| |Saccharose..................................................................10 g Glucose..........................................................................1g Citrate de fer (III)......................................................0,3 g|Urée..........................................................................400 g Eau, quantité suffisante pour un volume final de.........................................................................1000 ml| |Thiosulfate de sodium...............................................0,3 g Rouge de phénol....................................................0,024 g Gélose.............................................................9 g à 18 g Eau......................................................................1 000 ml 1) Selon le pouvoir gélifiant de la gélose.|B.7.2.2. Préparation : Dissoudre l'urée dans l'eau. Stériliser par filtration et 1) contrôler la stérilité. B.7.3. Milieu complet : B.7.3.1. Composition :| |B.6.2. Préparation : Dissoudre les composants ou le milieu de base complet déshydraté dans l'eau, en chauffant si nécessaire.|Milieu de base (B.7.1)...........................................950 ml Solution d'urée (B.7.2)............................................50 ml| |Si nécessaire, ajuster le pH de sorte qu'après stérilisation il soit de 7,4 ± 0,2 à 25 °C. Répartir le milieu, par quantités de 10 ml, dans des tubes à essai. Stériliser à l'autoclave (5.1) réglé à 121 °C pendant 15 min. Laisser reposer en position inclinée de façon à obtenir un culot de 2,5 cm à environ 5 cm de profondeur.|B.7.3.2. Préparation : Ajouter stérilement la solution d'urée au milieu de base préalablement fondu et ramené entre 44 °C et 47 °C. Répartir le milieu complet, par quantités de 10 ml, dans des tubes stériles (5.9). Laisser reposer en position inclinée. B.8. Milieu pour décarboxylation de la L-lysine : B.8.1. Composition :| |B.7. Gélose à l'urée (Christensen) : B.7.1. Milieu de base : B.7.1.1. Composition :|Monohydrochlorure de L-lysine..................................5 g Extrait de levure...........................................................3 g Glucose........................................................................1 g| |Peptone .........................................................................1g Glucose..........................................................................1g|Pourpre de bromocrésol........................................0,015 g Eau.......................................................................1000 ml| |Chlorure de sodium (NaCl)..........................................5 g Dihydrogénophosphate de potassium (KH2PO4).....................................................................2 g Rouge de phénol....................................................0,012 g Gélose.............................................................9 g à 18 g1) Eau.......................................................................1 000 ml 1) Selon le pouvoir gélifiant de la gélose.|B.8.2. Préparation : Dissoudre les composants dans l'eau, en chauffant si nécessaire. Si nécessaire, ajuster le pH de sorte qu'après stérilisation il soit de 6,8 ± 0,2 à 25 °C. Répartir le milieu, par quantités de 2 ml à 5 ml, dans des tubes de culture étroits (5.9) munis de capsules filetées. Stériliser à l'autoclave (5.1) réglé à 121 °C pendant 15 min.| |29 Chaoual 1438 23 juillet 2017|JOURNAL OFFICIEL DE LA REPUBLIQUE ALGERIENNE N ° 44 23| |---|---| |B.9. Réactif pour la recherche de la Galactosidase :|B.10.1.2. Préparation :| |B.9.1. Solution tampon : B.9.1.1. Composition :|Dissoudre les composants dans l'eau, en chauffant si nécessaire.| |Dihydrogénophosphate de sodium NaH2PO4..................................................................6,9 g Hydroxyde de sodium, solution à 10 mol/1............................................................environ 3 ml Eau, quantité suffisante pour un volume final de.............................................................................50 ml|Si nécessaire, ajuster le pH de sorte qu'après stérilisation il soit de 6,9 ± 0,2 à 25 °C. Transférer le milieu dans des tubes à raison de 3 ml par tube (5.9). Stériliser à l’autoclave (5.1) réglé à 121 °C pendant 15 min.| |B.9.1.2. Préparation : Dissoudre le dihydrogénophosphate de sodium dans environ 45 ml d'eau dans une fiole jaugée.|B.10.2 Solution de créatine (N- amidinosarcosine) : B.10.2.1. Composition :| |Ajuster le pH à 7 ± 0,2 à 25 °C avec la solution d'hydroxyde de sodium.|Créatine monohydratée............................................0,5 g Eau........................................................................100 ml| |Compléter à 50 ml avec de l'eau. B.9.2. Solution d'ONPG : B.9.2.1. Composition :|B.10.2.2. Préparation : Dissoudre la créatine monohydratée dans l'eau. B.10.3. Solution éthanolique de naphtol-1 :| |o-Nitrophényl D-galactopyranoside (ONPG)..................................................................0,08 g|B.10.3.1. Composition :| |Eau..........................................................................15 ml|Naphtol-1....................................................................6 g| |B.9.2.2. Préparation :|Ethanol à 96 % (fraction volumique)....................100 ml| |Dissoudre l'ONPG dans l'eau à environ 50 °C. Refroidir la solution. B.9.3. Réactif complet : B.9.3.1. Composition :|B.10.3.2 Préparation : Dissoudre le naphtol-1 dans l'éthanol. B.10.4. Solution d'hydroxyde de potassium : B.10.4.1. Composition :| |Solution tampon (B.9.1)...........................................5 ml Solution d'ONPG (B.9.2)........................................15 ml|Hydroxyde de potassium...........................................40 g Eau........................................................................100 ml| |B.9.3.2 Préparation : Ajouter la solution tampon à la solution d'ONPG. B.10. Réactifs pour la réaction de Voges-Proskauer (VP) : B.10.1 Milieu VP : B.10.1.1. Composition : Peptone........................................................................7 g|B.10.4.2. Préparation : Dissoudre l'hydroxyde de potassium dans l'eau. B.11. Réactifs pour la recherche de l'indole : B.11.1 Milieu tryptone/tryptophane : B.11.1.1. Composition :| |Glucose.......................................................................5 g Dipotassium hydrogénophosphate (K2HPO4).....................................................................5g Eau......................................................................1000 ml|Tryptone....................................................................10 g Chlorure de sodium (NaCl).........................................5 g DL-Tryptophane.........................................................1 g Eau .....................................................................1000 ml| ||24 JOURNAL OFFICIEL DE LA REPUBLIQUE ALGERIENNE N||29 Chaoual 1438 ° 44 23 juillet 2017|| |---|---|---|---|---| ||B.11.1.2. Préparation : Dissoudre les composants dans l'eau bouillante. Si nécessaire, ajuster le pH de sorte qu'après stérilisation il soit de 7,5 ± 0,2 à 25 °C. Répartir le milieu, par quantités de 5 ml, dans des tubes (5.9). Stériliser à l'autoclave (5.1) réglé à 121 °C pendant 15 min. B.11.2. Réactif de Kovacs : B.11.2.1. Composition : Diméthylamino-4 benzaldéhyde.................................5 g Acide chlorhydrique, = 1,18 g/ml à 1,19 g/ml ......................................25 ml Méthyl-2 butanol-2.................................................75 ml B.11.2.2 Préparation : Mélanger les composants. B.12. Gélose nutritive semi-solide : B.12.1. Composition : Extrait de viande...........................................................3 g Peptone.........................................................................5 g Gélose..............................................................4 g à 9 g1) Eau.......................................................................1 000 ml 1) Selon le pouvoir gélifiant de la gélose. B.12.2 Préparation : Dissoudre les composants dans l'eau, en chauffant si nécessaire. Si nécessaire, ajuster le pH de sorte qu'après stérilisation il soit de 7 ± 0,2 à 25 °C. Répartir le milieu dans des flacons de capacité appropriée (5.9). Stériliser à l’autoclave (5.1) réglé à 121 °C pendant 15 min. B.12.3 Préparation des boîtes de milieu gélosé : Répartir le milieu récemment préparé, par quantités d'environ 15 ml, dans des petites boîtes de Petri stériles (5.11). Les boîtes de milieu gélosé ne doivent pas être séchées.|Imprimerie Officielle-Les Vergers, Bir-Mourad Raïs, BP 376 - ALGER-GARE|B.13 Solution saline physiologique : B.13.1. Composition : Chlorure de sodium (NaCl)......................................8,5 g Eau......................................................................1000 ml B.13.2. Préparation : Dissoudre le chlorure de sodium dans l'eau. Si nécessaire, ajuster le pH de sorte qu'après stérilisation il soit de 7 ± 0,2 à 25 °C. Répartir le milieu dans des flacons ou dans des tubes (5.9), de sorte qu'après stérilisation ils contiennent 90 ml à 100 ml de solution. Stériliser à l'autoclave (5.1) réglé à 121 °C pendant 15 min. COUR DES COMPTES Décision du 7 Rajab 1438 correspondant au 4 avril 2017 modifiant la décision du 12 Chaâbane 1437 correspondant au 19 mai 2016 portant renouvellement des membres de la commission de recours compétente à l'égard des corps des fonctionnaires de la Cour des comptes. ———— Par décision du 7 Rajab 1438 correspondant au 4 avril 2017, la composition de la commission de recours compétente à l'égard des corps des fonctionnaires de la Cour des comptes est modifiée conformément au tableau ci-après : Représentants Représentants de l’administration des fonctionnaires Mohamed Salim Youcef Benour Benammar Hocine Benessam Abdelkader Benmiloud Nacer Nehal Karima Saidi Djallal Merdaoui Nasreddine Akchoul Abdelhafid Bouarres Mouloud Benkaci Saïd Boudaa Djamila Khelfat Widdad Aimene Nadia Boucida||
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